Table of Contents Table of Contents
Previous Page  73 / 100 Next Page
Information
Show Menu
Previous Page 73 / 100 Next Page
Page Background

319

Ces Urol 2016; 20(4): 317–325

ORIGINÁLNÍ PRÁCE

dochází k extrémní kondenzaci chromatinu a ztrátě

nukleosomální struktury typické pro somatické

buňky za vzniku vysoce stabilního a transkripčně

inertního komplexu. Při těchto dramatických pře‑

stavbách je až 85% histonů nahrazeno přechodný‑

mi proteiny a následně protaminy, které křížovými

vazbami prostřednictvím disulfidických můstků

stlačují chromatin do výsledného tvaru amerického

koblížku („doughnut“ shape). Zbylých 15 % histonů

vázaných na DNA je lokalizováno v oblastech gene‑

ticky významných pro vývoj časného zárodku (např.

promotorové oblasti, lokusy kontrolované imprin‑

tingem nebo lokusy kódující mikro-RNA). Kompakt‑

ní struktura a nerozpustný charakter chromatinu

spermií chrání otcovskou genetickou informaci

při přenosu mužským a ženským reprodukčním

traktem (7). Změny v jakékoliv fázi reorganizace

chromatinu mohou negativně ovlivňovat funkci

spermií (8). Přesné mechanizmy vedoucí k abnor‑

malitám chromatinu ve spermiích dosud nebyly

zcela objasněny, ale uvažuje se, že důležitou roli

může hrát (1) defektní kondenzace chromatinu

v průběhu spermatogeneze, (2) selhání apopto‑

tické kontroly, které umožňuje přežití defektních

spermií, (3) oxidační stres, (4) fragmentace vyvolaná

aktivitou endogenních kaspáz a endonukleáz a (5)

další patologické vnitřní a environmentální faktory

zahrnující nádorová onemocnění, cytostatika, va‑

rikokélu, dlouhodobé horečky, leukocytospermii,

profesionální expozici toxickým látkám, pokročilý

věk, apod. U infertilních mužů s predispozicí k frag‑

mentaci DNA ve spermiích se mohou uplatňovat

i genetické faktory jako polymorfizmus v genech

kontrolujících integritu genomu, meiotickou re‑

kombinaci, gametogenezi, opravné dráhy DNA,

detoxikační dráhy a antioxidační ochranu (5, 6, 9).

Ve světle těchto poznatků a s rozvojem techno‑

logií asistované reprodukce je zjevné, že dosavadní

diagnostika mužské infertility založená na konvenč‑

ní analýze spermií je nedostatečná. Průkaz zvýšené

fragmentace DNA ve spermiích může být význam‑

ný nejen pro posouzení fertilizačního potenciálu

spermií

in vivo

, ale i při hodnocení kvality spermií

před jejich využitím pro intrauterinní oplození (IUI),

fertilizaci in vitro (IVF) nebo intracytoplazmatickou

aplikaci spermie (ICSI). V posledních letech je proto

věnována značná pozornost metodám umožňují‑

cím posouzení různých aspektů poškození spermií,

včetně poškození DNA. K dispozici jsou jak metody

detekující přímo zlomy v DNA, tak metody nepří‑

mé, umožňující stanovení fragmentace DNA na

základě průkazu poruch v kondenzaci chromatinu

(10). Do první skupiny patří zejména kometový

test (Comet assay) neboli jednobuněčná gelová

elektroforéza a TUNEL [terminal deoxynucleotidyl

transferase-mediated 2`-deoxyuridine 5`-triphos‑

phate (dUTP)-nick end-labeling]. Nejčastěji využíva‑

nou nepřímou metodou je tzv. „sperm chromatin

integrity assay“ (SCSA) a v poslední době i „sperm

chromatin dispersion test“ (SCD).

Kometový test

umožňuje kvantifikovat zlomy

v DNA na úrovni jednotlivých buněk. Po rozmíchání

v agaróze jsou buňky naneseny na podložní sklo

a ovlivněny detergentem s vysokou koncentrací

solí k extrakci buněčných proteinů a membrán.

Následuje denaturace DNA v alkalickém prostředí

a elektroforéza, při které dochází v místech zlomů

k migraci rozvolněných smyček a fragmentů DNA

z jádra ke kladné elektrodě, zatímco intaktní DNA

zůstává v jádře (nukleoidu). Množství vycestované

DNA tak odráží stupeň jejího poškození (podrobně

viz. 11). Na rozdíl od somatických buněk jsou sper‑

mie chráněny membránou bohatou na disulfidic‑

ké vazby a DNA je v nich mnohem kompaktněji

kondenzována, což brání buněčné lyzi. Lyzační

proces je proto při zpracování spermií kombinován

s expozicí silnému antioxidantu, jako je dithiothrei‑

tol (DTT) (12) nebo dlouhodobým enzymatickým

působením např. proteinázou K (13).

TUNEL

Metoda kvantifikuje inkorporaci značeného deoxy‑

uridin trifosfátu (dUTP) do jedno- a dvouřetězco‑

vých zlomů DNA v reakci katalyzované terminální

deoxynukletidyl-transferázou. Množství inkorpo‑

rovaného dUTP pak může být kvantifikováno jak

průtokovým cytometrem, tak fluorescenčním nebo

světelnýmmikroskopem (14). Zejména hodnocení

FACSem poskytuje klinicky významné výsledky, po‑

dobně jako u kometového testu však zatím u této

metody nebyla stanovena obecně uznávaná hra‑

nice vymezující snížený fertilizační potenciál.